欢迎访问云南麻豆映像生物工程有限公司!
防伪查询
补充说明 同一防伪码不能重复查询!查询一次后作废!
科研中心

红A缓解视疲劳机理分析及文献

时间:2016-04-19 来源:原创


一、红A缓解视疲劳机理分析

缓解视疲劳功能

机理1:人类视网膜和中枢神经系统富含不饱和脂肪酸,因此,氧化产生的自由基很容易使其发生过氧化损伤。有研究表明,虾青素很容易通过血脑屏障和细胞膜,能有效地防止视网膜的氧化和感光细胞的损伤尤其是视网膜黄斑变性,从而起到缓解视疲劳的功能。

机理2:虾青素在体内被转化成β-胡萝卜素和视黄醇(ROH),直接参与视网膜上吸收光线的化学物质——视紫红质的形成,从保护眼睛,起到缓解视疲劳的功能。

二、 第一部分支撑文献,如下:

1、《虾青素对视觉调节和眼疲劳的作(健康受量探索研究)[1]

新田卓也等人健康受者的双盲研究对虾青素(AX)在视觉调节和眼疲方面的最佳量和安全性行客观评。受者分3,即0mgAX 0mg)、6mgAX 6mg)和12mgAX 12mg),数为虾青素每日入量.10名受成,三30名。封工作(如VDT工作)每日耗时约7.连续4周食用试验食品。然后4周的跟踪,通较摄入前后的观测值进果:.AX 12mg观调节能力较摄青素前有著提高.入前相比,AX 6mg12mg调节时间显缩短,而AX 0mg6mg组负调节时间显缩.VAS果表明,AX 6mg中自症状的多参数均得到改善.实验试验发现AX致的床情况争。同试验食品的入未造成任何副作用。而言之,每日6mg青素可改善与视觉调节能力和自症状相关的眼疲,因此,青素每日最佳大于6mg

2青素对视觉调节和眼疲的作用(健康受者功效定研究)[2].

白取谦治等人通过双盲研究验证了雨生球藻虾青素对视觉调节和眼疲劳的功效及其安全性。研究共分两组受试者,其中一组每日摄入0mg虾青素(对照组),另一组摄入6mg虾青素(AX组)。受试者均为患有眼疲劳的自愿受试者。每组由二十名受试者组成,食用试验食品4周。试验食品摄入前后测量子目标调节能力、正调节时间和负调节时间,对眼疲劳程度进行客观评估。此外还使用VAS评价受试者自觉眼疲劳程度。虾青素安全性依据虾青素摄入前后的实验室试验数值变化以及医生问询进行评估。.①AX组子目标调节能力(变化率)明显高于对照组。②AX组正调节和负调节时间率(变化率)明显高于对照组。. ③同对照组相比,通过VAS测量的AX组自觉眼疲劳程度在两个参数上出现明显改善,即“模糊感”和“刺激趋势”。④实验室试验值变化未出现临床争议事项,且尚未发现试验食品所导致的不良反应。总而言之,每日6mg(每日2丸,每丸3mg)的雨生红球藻虾青素可改善视觉调节能力和眼疲劳自觉症状。. 同时,试验证明虾青素绝对安全。

3、《含有虾青素的药丸食品的调节功能以及对眼疲劳的影响[3].

长木康典等人双盲安慰剂随机对照检验了从雨生红球藻中提取的虾青素对患有视觉疲劳所致视屏终端综合症(VDT)受试者的补充作用。受试者分为两组,即6mg虾青素治疗组和安慰剂组。 此外,研究还对虾青素摄入安全性进行了评估。持续4周的虾青素摄入期后对各组视力调节情况进行评价,同时设计主观问卷,对视觉疲劳(眼疲劳)进行评价。虾青素治疗组的二十五名受试者和安慰剂组的23名受试者接受了眼疲劳检查。研究分析了31名治疗组受试者和28名安慰剂组受试者的情况后对安全性作出评价。实验观察结果如下:① 虾青素治疗组在补充虾青素前后的视觉调节变化较安慰剂组有明显改善。②同安慰剂组相比,虾青素补充组视觉调节变化率较大。③主观视觉疲劳问卷表明“头重现象”明显减轻。其他得到明显改善的疲劳症状包括“弱视”和“肩部和背部僵硬”。④在安全性参数分析和副作用方面,治疗组和安慰剂组在4周的补充期后未发现明显差异。.结果表明,每天摄入6mg从雨生红球藻中提取的虾青素可改善眼疲劳症状。. 此外,健康成年人可安全食用上述剂量水平的虾青素。

4、《取天然青素可改善人类视敏度和肌肉疲从而提高运机能[4].

泽木启祐等人研究了虾青素对视敏度和肌肉疲劳的改善作用。. 两项补充研究均采用藻类(雨生红球藻)体内提取的虾青素。实验A检验了18位健康成年男性受试者的四项视敏度参数,受试者平均分为两组(治疗组和对照组)。所测量的参数包括补充前后的深度视觉、临界闪烁融合以及静态和动态视敏度。第二项调查研究(实验B)采用16名成年男性受试者,用于检验虾青素补充对1200米长跑前后体内乳酸形成的作用。两项实验中的治疗组成员每日摄入一粒虾青素胶囊,共持续4周(每天6mg虾青素),而对照组复用安慰剂胶囊。.结果:实验A中,治疗组深度视觉和临界闪烁融合较对照组有明显改善。治疗组未发现虾青素对静态和动态视敏度产生作用。实验B中,治疗组成员运动(1200米长跑)后2分钟时的血乳酸浓度明显低于对照组。实验未发现虾青素摄入对血清生物性检查和血液检查的作用。研究结果表明,虾青素可改善视敏度和肌肉疲劳,从而提高运动机能。

5、《虾青素对调节功能障碍所致眼疲的作用[5]

岩崎常人等人研究了青素对调节功能障碍所致眼疲的作用。10名健康受者每日6mg青素(AX)或0mg青素(安慰P),持14天,然后行近距离20。近距离察前后以及休息10后分别测量眼疲相关调节功能和自症状。而后通双盲交叉法AXP数据行比。上述操作完成后,延AXP组调节和放松时间。两果表明,同AX相比,P组调节放松时间在操作后明。同AX相比,P组经10休息后的调节和放送时间P内眼疲、眼沉重、力模糊和眼干症状有所增加,而AX内眼疲和眼沉重症状有所加重果表明,青素能调节功能障碍所致眼疲

6、《饮食类胡萝卜素虾青素保护小鼠视网膜细胞免受体内外氧化应激[6]

Nakajima,Y等人调查了虾青素是否在体内和体外对视网膜神经节细胞具有神经保护作用。在体外,通过24小时与二氧化氢(H2O2)接触或血清剥夺造成视网膜损伤,并且通过WST试验来测定细胞活性。在培养出的视网膜神经节细胞(RGC-5,即通过E1A病毒转换成的大鼠神经节细胞系)中,虾青素抑制二氧化氢(H2O2)或血清剥夺引起的神经毒性,并减少由各种活性氧(ROS)造成的细胞内氧化。此外,虾青素还减少了RGC-5中由血清剥夺引起的自由基生成。在小鼠体内,虾青素减少了玻璃体内N-甲基-D-天冬氨酸(NMDA)注射引致的视网膜损伤(视网膜神经节细胞减少以及内网状层厚度降低)。另外,虾青素减少了4-羟基-2-壬烯醛(4-HNE)-改性蛋白质(脂质过氧化反应的标志)和8-羟基-脱氧鸟苷(8-OHdG;氧化DNA损伤的标志)。上述发现表明,虾青素无论是体内还是体外都具有神经保护作用,防止视网膜损伤,并且其保护作用可以通过其抗氧化作用来实现部分调节。

7、《视黄醇缺乏大鼠可将药理剂量虾青素转换为维生素A:虾青素,叶黄素和β-胡萝卜素的抗氧化潜能[7]

Sangeetha RK等人的论文是研究虾青素和叶黄素转换成类似于β-胡萝卜素的视黄醇(ROH)的可能性以及测定与大鼠视黄醇(ROH)缺乏导致的Na+/K+-三磷酸腺苷酶(ATPase)、抗氧化剂分子和脂质过氧化作用(LPx)相关的类胡萝卜素抗氧化能力。通过喂食缺乏视黄醇(ROH)的食物使大鼠(n=5/组)患上视黄醇(ROH)缺乏症。对视黄醇缺乏症(RD)的大鼠强行喂食虾青素、叶黄素、β-胡萝卜素或单独喂食花生油(RD组),共喂食7天。结果表明,RD组的血浆视黄醇含量降低(0.3μmol/L),而在虾青素小组和β-胡萝卜素小组中,由于肠内β-胡萝卜素15,15′-单氧酶活性的增加(69%和70%),使得视黄醇含量上升(分别为4.9和5.7μmol/L)。与RD小组相比,虾青素、叶黄素、β-胡萝卜素在血浆中使脂质过氧化作用(LPx)分别降低了45%、41%和40%,而在肝脏中则分别降低了59%、64%和60%。Na+/K+-三磷酸腺苷酶(ATPase)的降低以及超氧化物歧化酶、过氧化氢酶和谷胱甘肽硫转移酶活性的增加也支持脂质过氧化作用的降低。该报告确定在视黄醇缺乏症的大鼠中,虾青素被转化成β-胡萝卜素和视黄醇(ROH),类胡萝卜素抗氧化能力顺序为虾青素>叶黄素>β-胡萝卜素。

8、《软密封中所含虾青素的对中老年龄人眼睛的调节功能的影响》[8]

梶田雅義等人撰文报道认为老花眼是伴随着人的年龄增加,近距离眼睛作用时,因为眼睛的调节能力降低所产生的视力障碍的症状。从40岁开始就会慢慢产生这种现象。人体眼睛内的水晶体弹性降低,所以睫状肌的收缩也不能使水晶体膨胀,不能增加屈伸的能力。伴随着年龄的增加,睫状肌的功能降低是一个原因,但是,认为瞳孔括约肌、瞳孔散大肌的功能降低也是其中的原因。发现了肩膀酸、眼睛痛、头疼等眼疲劳的症状,虽然对QOL有很大的损伤,但是利用老花眼镜等还是这种近距离视力障碍治疗的第一选择。讨论了从老花眼开始,以中老年龄人为对象,虾青素AX的摄取对眼睛的调节功能的影响。AX摄取前后用Triiris C9000仪器进行了近距离眼视力反射的测定,计算和评价了瞳孔收缩率。

9、虾青素对高眼压诱导的视网膜损伤的抑制作用[9]

Cort A等人撰文论述虾青素(ASX)对高眼压(EIOP)大鼠视网膜可能具有的保护作用。大鼠被随机分成两组,并在8周的时间内加入橄榄油或虾青素(每天5mg/kg)。通过烧烙3支上巩膜静脉引起高眼压,而未进行手术的鼠眼用于进行控制。在实验末期,通过对视觉诱发电位(VEP)进行电生理测量,从而测定出虾青素(ASX)的神经保护作用,并且随后摘取大鼠眼球。这些眼球被分成4组,即控制组、虾青素(ASX)治疗组、高眼压(EIOP)组和EIOP+ASX治疗组。通过评估视网膜细胞死亡、蛋白质羰基含量以及一氧化氮合酶-2NOS-2)的特征来确定虾青素(ASX)的视网膜保护性能。所有视觉诱发电位(VEP)成分在高眼压(EIOP)组中的潜伏期被大大延长,并在服用虾青素(ASX)后回到控制水平。与控制组相比,高眼压(EIOP)组出现了强烈的视网膜蛋白质氧化,而在经过虾青素(ASX)治疗的高眼压(EIOP)组中的视网膜蛋白质氧化回归到基准线水平。通过蛋白质印迹分析和免疫组织化学染色法,在高眼压(EIOP)组的大鼠中测得的一氧化氮合酶-2NOS-2)特征比虾青素(ASX)治疗组和控制组大得多。视网膜TUNEL染色显示,所有高眼压(EIOP)组中均出现了细胞死亡现象,但经过虾青素(ASX)治疗之后,死亡细胞的比率与未经治疗的高眼压控制组相比大大降低。数据证明了高眼压(EIOP)组中的氧化损伤作用,以及虾青素(ASX)对于高眼压的保护作用。

10、虾青素对高眼压诱导的视网膜损伤的抑制作用[10]

中村彰等人撰文研究关于变胞藻黄素对视力功能的影响,该研究选取40岁以上的健康人中49人的49双眼睛。全部案例按照年龄和性别相同,分成4组,每组每天一次,分别服用0mg、2mg、4mg、12mg的变胞藻黄素,接连服用28天。结果发现,每天服用4mg和12mg的那组人的远距离的裸眼视力有明显的改善。每天服用4mg和12mg的那组人的眼睛调节时间有明显的缩短。折射值、闪烁不定、瞳孔反应则没有变化。

11、《微藻对内源性和外源性晚期糖化终产物对人视网膜色素上皮细胞影响的保护作用[11]

Sun Zheng等人研究认为晚期糖基化终末产物(AGEs)的形成和累加是一种关键的病理生理过程,与糖尿病的各种并发症如,糖尿病患者的视网膜症相关。在现行研究中,第一次研究了如何利用三种微澡菌株,包括它们的萃取物及活性化合物,细胞模型内的内生及外生晚期糖基化终末产物的保护效果。结果表明,人工培养的视网膜色素上皮细胞ARPE-19内,萃取的小球藻及其营养成分虾青素通过抑制细胞内的氧化应激,对关键的晚期糖基化终末产物,内生N(5)羟甲基赖氨酸(CML)的形成具有抑制作用。另一方面,萃取的小球藻、原核小球藻和菱形藻及其营养成分虾青素、叶黄素和二十碳五烯酸(EPA),能够减缓由外生晚期糖基化终末产物引起的有害影响如,细胞增殖及血管内皮生长因子(VEGF)及基质金属酶蛋白(MMP)-2的mRNA的上调,这些都是糖尿病视网膜病发病机制中的关键步骤。这些结果表明,虾青素、叶黄素和二十五碳烯酸在控制糖尿病发展时发挥着积极作用。因此,这些微藻类可以成为糖尿病视网膜病患者的有益食品并对其具有预防作用。

12、《缺乏视黄醇的老鼠能将一定剂量的药理学虾青素转换为视黄醇:虾青素、叶黄素和贝他胡萝卜素的抗氧化潜在性[12]

Sangeetha R K等人研究认为视黄醇(ROH)和前维生素-A类胡萝卜素被推荐用来治疗视黄醇的缺乏。叶黄素类胡萝卜素是一种强有力的抗氧化剂,能够调节健康紊乱。麻豆文化传媒app官网假设T非前维生素-A类胡萝卜素可能会产生视黄醇,并且在视黄醇缺乏的情况下,会抑制脂质发生过氧化反应。本研究旨在(i)研究虾青素和叶黄素如何经过生物转化成为与贝他胡萝卜素相似的视黄醇,并且(ii)通过参照缺乏视黄醇的老鼠体内的Na(+)/K(+)-三磷酸腺苷酶、抗氧化剂分子和脂质的过氧化反应(Lpx),确定这些类胡萝卜素的抗氧化能力。通过给老鼠(每组5只)供应一种缺乏视黄醇的饮食,可以使老鼠的视黄醇缺乏。然后,连续七天,为缺乏视黄醇(RD)的老鼠强行喂养虾青素、贝他胡萝卜素或仅仅喂养花生油(RD组)。结果表明,RD组中老鼠体内血浆内的视黄醇水平有所下降(0.3 micromol/L),而缺乏视黄醇的、分别喂养虾青素和贝他胡萝卜素组中的老鼠体内的视黄醇水平有所上升(分别为4.9和5.7 micromol/L),这是因为这两组老鼠肠道内的贝他胡萝卜素15和15\'-单氧酶的活动增强了(69%和70%)。同时,与RD组相比,这两组老鼠通过脂质过氧化反应,体内的虾青素、叶黄素和贝他胡萝卜素分别降低了45%、41%和40%(血浆);59%、64%和60%(肝脏)。Na(+)/K(+)-三磷酸腺苷酶和超氧化物歧化酶、过氧化氢酶及谷胱甘肽-S-转移酶活动的降低使脂质过氧化反应变慢。总之,本报告确定,在缺乏视黄醇的老鼠体内,虾青素转换成了β-胡萝卜素和视黄醇,并且类胡萝卜素的抗氧化能力大小依次为虾青素>叶黄素>贝他胡萝卜素。

13、《虾青素、玉米黄质素及叶黄素对受长波紫外线辐射细胞内脱氧核糖核酸的损伤和修复[13]

Marcello Santocono等人研究认为为了更多了解人类视网膜内主要类胡萝卜素(叶黄素和玉米黄质素)的抗氧化作用,本研究对其抗氧化活动和能力做了调查。同时,也对虾青素做了研究,因为虾青素的结构与叶黄素和玉米黄质素的结构非常接近。通过利用化学发光技术,对这些分子的抗氧化的活动进行评估,并将光泽精和鲁米诺分别作为使超氧化物自由基和过氧化氢发生化学发光的探针。结果发现,所有这三种类胡萝卜素均具有相似的清除超氧化物的活动。使过氧化氢–鲁米诺化学发光发生衰减的顺序依次为玉米黄质素>虾青素>叶黄素。

通过利用由受长波紫外线辐射产生的氧化应激影响的SK.N.SH人类神经母细胞瘤和老鼠气管上皮细胞组成的生物体系,可以探寻这三种化合物所具有一定的抗氧化性。特别是,麻豆文化传媒app官网可以确定这三种化合物是否能够减小对脱氧核糖核酸的伤害和对脱氧核糖核酸修复动力学的影响。

通过彗星试验,即利用一种快速且灵敏的单细胞凝胶电泳技术,检测对单个细胞内主要脱氧核糖核酸的损伤,从而对脱氧核糖核酸的损伤进行评价。神经母细胞瘤细胞对氧化辐射具有更强的抵抗力。用长波紫外线对老鼠的上皮细胞辐射2分钟后,类胡萝卜素的存在会减少对脱氧核糖核酸的伤害。但是,从神经母细胞瘤细胞实验得到的结果却不同,在此实验中,类胡萝卜素的存在会增加由长波紫外线引起的伤害。

对上皮细胞增加2分钟的长波紫外线照射后,似乎并不能改善脱氧核糖核酸修复的动力学。相反,却对玉米黄质素(潜伏60′后)和叶黄素(潜伏180′后)产生了基因毒性影响。

在前15分钟的潜伏期间,神经母细胞瘤细胞在受到长波紫外线辐射30分钟后,类胡萝卜素对其脱氧核糖核酸修复的动力学具有积极影响。延长辐射时间后,测得表象却不再是一个常量,并且不能观测到基因毒性的影响。本研究的数据还提供了关于人类视网膜主要黄斑色素类胡萝卜素的抗氧化和助氧化活动的附加信息。

14、《鸟类视网膜的锥形油滴[14]

Timothy H. Goldsmith等人研究认为利用显微分光光度法,对来自于11个种族共19种鸟类的锥形油滴进行检查。利用矿物油将单一的油滴扩大,使其悬浮在含水甘油中,测得其吸光范围在700到320 nm之间。因此建议,要用显微镜,对与油滴的大小、位置及外观相关的类胡萝卜素进行客观测量,从而对油滴进行分类。一些油滴不含类胡萝卜素,并且在波长超过320nm后,呈透明状态。其他油滴在吸光度为385或402 nm时,呈无色,但是含有类胡萝卜素。传统认为苍白油滴呈绿色,并含有一种由两种类胡萝卜素混合而成的混合物。所有这些类型的油滴均与黄色红色油滴不同。红色油滴含有虾青素酯类,黄色油滴含有光谱与玉米黄质素相似的类胡萝卜素。402 nm的发色团是棓黄质,C27载脂蛋白-类胡萝卜素具有8个双键。

在较苍白的油滴中,体内光学密度为1到4。在黄色油滴中,光学密度的范围达到了8,并且在红色油滴中,光学密度的范围超过了20。所有含有类胡萝卜素的油滴对紫外线均具有很大的吸光度。不同种类的视网膜中几种不同类油滴的不同频率表明,这些细胞器能够适应自然选择,可能并具有多种功能。

15、《叶黄素、玉米黄质素及虾青素能防止活性氮族伤害SK-N-SH人类神经母细胞瘤细胞内的脱氧核糖核酸[15]

本研究的目的是评估人类视网膜黄斑色素中主要类胡萝卜素(叶黄素和玉米黄质素)的能力,从而防止SK-N-SH人类神经母细胞瘤细胞受到不同RNOS供体的伤害。尽管,虾青素从未与人类眼睛分离,但是本研究还是对其作了概括,因为虾青素的结构与叶黄素和玉米黄质素的结构非常接近,并且虾青素不会受到紫外线伤害。谷胱甘肽-甲基乙基醚能够对脱氧核糖核酸构成伤害,它是由Na2N2O3分解产生的一氧化氮工体、由SIN-1分解产生的硝酰基阴离子工体,是过氧亚硝酸盐产生剂。

通过彗星试验,即利用一种快速且灵敏的单细胞凝胶电泳技术,探测对单个细胞内主要脱氧核糖核酸的伤害,从而对脱氧核糖核酸的伤害进行评价。尾矩参数作为脱氧核糖核酸的损害指数。所有由RNOS供体培养的样品内尾矩值的增加表明,脱氧核糖核酸已经受到了伤害。所得数据表明,玉米黄质素、叶黄素和虾青素能否减少脱氧核糖核酸的受伤害程度取决于RNOS供体的类型和使用的类胡萝卜素的浓度。在研究期间,所有的类胡萝卜素均能够防止神经母细胞瘤细胞内的脱氧核糖核酸受到伤害,只要此细胞接触到了谷胱甘肽-甲基乙基醚。但是,如果使用另外两种RNOS供体时,表现会所不同。仅仅有类胡萝卜素(无RNOS供体)时,不会使脱氧核糖核酸受到伤害。光谱广度测量研究表明,受试类胡萝卜素与RNOS的反应顺序并不与脱氧核糖核酸是否受到保护相一致。通过本研究,提供了关于人类视网膜黄斑色素类胡萝卜素活动的信息。

16、《在意大利进行的与年龄相关的黄斑病研究中的类胡萝卜素和抗氧化剂:一年后的多焦视网膜电图的变化[16]

目标:评估短期内补充类胡萝卜素和抗氧化剂对非晚期且与年龄相关的黄斑病恶化(AMD)病人视网膜功能的影响。

设计:随机对照试验

参与者:登记27个非晚期的与年龄相关的黄斑病恶化的病人,他们的视力均大于等于最小分辨角的对数,然后将他们随机分成两组,各组年龄相似。然后,其中一小组的15个病人连续12个月每天口服维他命C(180毫克)、维他命E(30毫克)、锌(22.5毫克)、铜(1毫克)、叶黄素(10毫克)、玉米黄质素(1毫克)和虾青素(4毫克)(AZYR SIFI、加拿大、意大利)(作为AMD[T-AMD]小组;平均年龄69.4±4.31岁;共15只眼睛);另外一小组的12个病人在这12个月期间,在饮食中没有补充上述任何物质(作为非AMD[NT-AMD]小组;平均年龄69.7±6.23岁;共12只眼睛)。按照基准,将他们与15个年龄相似的健康的控制体作比较。

方法:6个月和12个月后,分别对在预处理(基准)水平下和非晚期与年龄相关的黄斑病恶化条件下的病人的多焦点视网膜电图进行评价,此多焦点视网膜点图与61 M-刺激相对应,位于视野中心20°处。

主要结果测定:多焦点视网膜点图反映了从五个小凹到视网膜赤道之间的偏心区域即,0°到2.5°(R1)、2.5°到5°(R2)、5°到10°(R3)、10°到15°(R4)和15°到20°(R5)测得的一级二进制核心N1–P1成分的振幅密度(RAD,毫微伏特/度)。

结果:按照基准,通过与健康的控制体作比较,麻豆文化传媒app官网观测到T-AMD和NT-AMD病人R1和R2的N1–P1 RADs明显减少了(单方面分析方差P<0.01)。T-AMD和NT-AMD病人R3-R5的N1–P1 RADs并不会与控制体内的数值有明显不同(P>0.05)。按照基准,观测到的T-AMD和NT-AMD病人R1-R5的N1–P1 RADs并无明显差别(P>0.05)。治疗6和12个月后,T-AMD病人R1和R2的N1–P1 RADs具有明显增加(P<0.01),但是R3-R5的N1–P1 RADs并无任何明显变化(P>0.05)。同时,NT-AMD病人R1-R5的N1–P1 RADs也无任何明显变化(P>0.05)。

结论:可以通过补充类胡萝卜素和抗氧化剂,可以改善非晚期与年龄相关的黄斑病恶化病人的眼睛内中心视网膜的功能异常(0°–5°)。但是,在其他周边区域,网膜的功能并不会发生变化(5°–20°)。


三、国内外与该产品缓解视疲劳功能相关支撑其他文献列表

编号

文章名称

备注

1

虾青素对vdt操作员视疲劳的改善作用

[17]

2

生活習慣病と眼 生活習慣病と抗加齢眼科学レニンーアンジオテンシン系と炎症制御による網脈絡膜病態の是

[18]

3

Chlamydomonas sensory Rhodopsins A and B: Cellular content and role in photophobic responses Govorunova EG.;

[19]

4

Carotenoid content of chlorophycean microalgae: factors determining luteinaccumulation in Muriellopsis sp (Chlorophyta) Del Campo JA.;

[20]

5

The effects of dietary carotenoid intake on carotenoid accumulation in the retina of a wild bird, the house finch (Carpodacus mexicanus)

[21]

6

Eye adaptation todifferent light environments in two populations of mysis relicta: a comparative study of carotenoids and retinoids.

[22]

7

Distribution of Retinal Cone Photoreceptor Oil Droplets, and Identification of Associated Carotenoids in Crow (Corvus macrorhynchos)

[23]

8

Effect of 5-S-GAD on UV-B-induced cataracts in rats

[24]

9

evalsuation of the effects of retinoids and carotenoids on egg quality using a microinjection system

[25]

10

Inhibition of choroidal neovascularization with an anti-inflammatory carotenoid astaxanthin

[26]

11

Carotenoids and Antioxidants in Age-Related Maculopathy Italian Study  Vincenzo Parisi

[27]

12

Modified saponification and HPLC methods for analyzing carotenoids from the retina of quail: implications for its use as a nonprimate model species

[28]

13

Identification and Metabolic Transformations of Carotenoids in Ocular Tissues of the Japanese Quail Coturnix japonica

[29]

14

Suppressive effects of astaxanthin against rat endotoxin-induced uveitis by inhibiting the NF-kappaB signaling pathway

[30]

15

Influence of egg vitamin A status and egg incubation temperature on subsequent development of the early vertebral column in Atlantic salmon fry

[31]

16

Induction factors derived from carotenoids and vitamin A during the ovarian maturation of Litopenaeus vannamei

[32]

17

Effects of astaxanthin on lipopolysaccharide-induced inflammation in vitro and in vivo

[33]

18

In vitro antimutagenic and in vivo anticlastogenic effects of carotenoids and solvent extracts from fruits and vegetables rich in carotenoids

[34]

参 考 文 献

[1] 新田卓也,大神一浩,大野重昭,其他;虾青素的调节功能以及对视疲劳的影响——以健康正常的成年人为对象设定摄取量的实验.临床医药2005;21:543-556.(注:日文文献

[2] 白取谦治,大神一浩,大神一浩,其他;虾青素的调节功能以及对视疲劳的影响——以健康正常的成年人为对象的试验效果的确认.临床医药2005;21:637-650.(注:日文文献

[3] 长木康典,三原美晴,塚原宽树,其他:含有虾青素的药丸食品的调节功能以及对眼疲劳的影响.临床医药2006;22:41-54.(注:日文文献

[4] 泽木启祐,吉仪宏,青木和浩,其他:虾青素对运动表现的影响.关于运动选手的视力功能和肌肉疲劳程度恢复的效果.临床医药 18:1085-1100,2002(注:日文文献

[5] 岩崎常人,田原昭彦:虾青素对视疲劳的有用性.新眼科2006;23:829-834.(注:日文文献

[6] Astaxanthin, a dietary carotenoid, protects retinal cells against oxidativestressin-vitroandinmicein-vivo.Nakajima,Y;Inokuchi,Y;Shimazawa,M;Otsubo,K;Ishibashi,T;Hara,H;Journal of Pharmacy and Pharmacology ; 0022-3573 ; 2008 ; vol.60 ; no.10 ; p.1365-1374.

[7] Retinol-deficient rats can convert a pharmacological dose of astaxanthin to retinol: antioxidant potential of astaxanthin, lutein, and beta-carotene. Sangeetha RK;Baskaran V;Canadian Journal of Physiology and Pharmacology ; 0008-4212 ; 2010 ; vol.88 ; no.10 ; p.977-985.

[8] アスタキサンチン含有ソフトカプセルの中高齢者の眼の調節機能に及ぼす影響. 梶田雅義;塚原寛樹 ;加藤末央;診療と新薬 ; 0037-380x ; 2009 ; vol.46 ; no.3 ; p.89.

[9] Suppressive effect of astaxanthin on retinal injury induced by elevated intraocular pressure.Cort A;Ozturk N;Akpinar D;Unal M;Yucel G;Ciftcioglu A;Yargicoglu P;Aslan M;Regulatory Toxicology and Pharmacology ; 0273-2300 ; 2010 ; vol.58 ; no.1 ; p.121-130.

[10] アスタキサンテンによる視機能の変化.中村彰;磯部綾子;大高康博;中田大介;本間知佳;櫻井禅;臨床眼科 ; 0370-5579 ; 2004 ; vol.58 ; no.6 ; p.1051-1054.

[11] Protective actions of microalgae against endogenous and exogenous advanced glycation endproducts (AGEs) in human retinal pigment epithelial cells. Sun Zheng;Liu Jin;Zeng XiaoHui;Huangfu JieQiong;Jiang Yue;Wang MingFu;Chen Feng;Food & Function ; 2042-6496 ; 2011 ; vol.2 ; no.5 ; p.251-258.

[12] Retinol-deficient rats can convert a pharmacological dose of astaxanthin to retinol: antioxidant potential of astaxanthin, lutein, and beta-carotene. Sangeetha RK;Baskaran V;Can J Physiol Pharmacol .2010V88N10:977-85.

[13] Influence of astaxanthin, zeaxanthin and lutein on DNA damage and repair in UVA-irradiated cells. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, Volume 85, Issue 3, 1 December 2006, Pages 205-215. Marcello Santocono, Monica Zurria, Marco Berrettini, Donatella Fedeli, Giancarlo Falcioni

[14] The cone oil droplets of avian retinas. Timothy H. Goldsmith, James S. Collins, Sherry Licht ;Vision Research, Volume 24, Issue 11, 1984, Pages 1661-1671.

[15] Lutein, zeaxanthin and astaxanthin protect against DNA damage in SK-N-SH human neuroblastoma cells induced by reactive nitrogen species. Marcello Santocono, Monica Zurria, Marco Berrettini, Donatella Fedeli, Giancarlo Falcioni ;Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, Volume 88, Issue 1, 27 July 2007, Pages 1-10.

[16] Carotenoids and Antioxidants in Age-Related Maculopathy Italian Study : Multifocal Electroretinogram Modifications after 1 Year.  Vincenzo Parisi, Massimiliano Tedeschi, Geltrude Gallinaro, Monica Varano, Sandro Saviano, Stefano Piermarocchi, CARMIS Study Group; Ophthalmology, Volume 115, Issue 2, February 2008, Pages 324-333.e2.

[17] 阎英杰;虾青素对vdt操作员视疲劳的改善作用[J].;国外医学;中医中药分册;2004(01).

[18] 生活習慣病と眼 生活習慣病と抗加齢眼科学レニンーアンジオテンシン系と炎症制御による網脈絡膜病態の是正石田晋;日本眼科學會雜誌 ; 0029-0203 ; 2009 ; vol.113 ; no.3 ; p.403-423 ;

[19] Chlamydomonas sensory Rhodopsins A and B: Cellular content and role in photophobic responses Govorunova EG.;Jung KH.;Sineshchekov OA.;Spudich JL.;Biophysical Journal ; 0006-3495 ; 2004 ; vol.86 ; no.4 ; p.2342-2349

[20] Carotenoid content of chlorophycean microalgae: factors determining luteinaccumulation in Muriellopsis sp (Chlorophyta) Del Campo JA.;Moreno J.;Rodriguez H.;Vargas MA.;Rivas J.;Guerrero MG.;Journal of Biotechnology ; 0168-1656 ; 2000 ; vol.76 ; no.1 ; p.51-59 ;

[21] The effects of dietary carotenoid intake on carotenoid accumulation in the retina of a wild bird, the house finch (Carpodacus mexicanus). Toomey, M.B.;McGraw, K.J.;Archives of Biochemistry and Biophysics ; 0003-9861 ; 2010 ; vol.504 ; no.1 ; p.161-168

[22] Eye adaptation todifferent light environments in two populations of mysis relicta: a comparative study of carotenoids and retinoids. Feldman, Tatiana;Yakovleva, Marina;Lindstrom, Magnus;Donner, Kristian;Ostrovsky, Mikhail;Journal of Crustacean Biology ; 0278-0372 ; 2010 ; vol.30 ; no.4 ; p.636-642 ;

[23] Distribution of Retinal Cone Photoreceptor Oil Droplets, and Identification of Associated Carotenoids in Crow (Corvus macrorhynchos). Rahman, Mohammad Lutfur;Yoshida, Kazuyuki;Maeda, Isamu;Tanaka, Hideuki;Sugita, Shoei;Zoological Science ; 0289-0003 ; 2010 ; vol.27 ; no.6 ; p.514-521 ;

[24] Effect of 5-S-GAD on UV-B-induced cataracts in rats. Kawada H;Kojima M;Kimura;Japanese Journal of Ophthalmology ; 0021-5155 ; 2009 ; vol.53 ; no.5 ; p.531-535 ;

[25] evalsuation of the effects of retinoids and carotenoids on egg quality using a microinjection system,Haga, Satoru;Suzuki, Tohru;Aquaculture ; 0044-8486 ; 2008 ; vol.282 ; no.1/4 ; p.111-116 ;

[26] Inhibition of choroidal neovascularization with an anti-inflammatory carotenoid astaxanthin. Izumi-Nagai,K;Nagai,N;Ohgami,K;Satofuka,S;Ozawa,Y;Tsubota,K;Ohno,S;Oike,Y;Ishida,S;Investigative Ophthalmology & Visual Science ; 0146-0404 ; 2008 ; vol.49 ; no.4 ; p.1679-1685 ;

[27] Carotenoids and Antioxidants in Age-Related Maculopathy Italian Study Vincenzo Parisi; Massimiliano Tedeschi;Geltrude Gallinaro;Ophthalmology ; 0161-6420 ; 2008 ; vol.115 ; no.2 ; p.324-333 ;

[28] Modified saponification and HPLC methods for analyzing carotenoids from the retina of quail: implications for its use as a nonprimate model species.oomey,MB;McGraw,KJ;Investigative Ophthalmology & Visual Science ; 0146-0404 ; 2007 ; vol.48 ; no.9 ; p.3976-3982 ;

[29] Identification and Metabolic Transformations of Carotenoids in Ocular Tissues of the Japanese Quail Coturnix japonica. Prakash Bhosale;Bogdan Serban;Da You Zhao;Biochemistry ; 0006-2960 ; 2007 ; vol.46 ; no.31 ; p.9050-9057 ;

[30] Suppressive effects of astaxanthin against rat endotoxin-induced uveitis by inhibiting the NF-

kappaB signaling pathway. Suzuki Y;Ohgami K;Shiratori K;Jin XH;Ilieva I;Koyama Y;Yazawa K;Yoshida K;Kase S;Ohno S;Experimental Eye Research ; 0014-4835 ; 2006 ; vol.82 ; no.2 ; p.275-281 ;

[31] Influence of egg vitamin A status and egg incubation temperature on subsequent development of the early vertebral column in Atlantic salmon fry. Ornsrud R;Wargelius A;Saele O;Pittman K;Waagbo R;Journal of Fish Biology ; 0022-1112 ; 2004 ; vol.64 ; no.2 ; p.399-417 ;

[32] Induction factors derived from carotenoids and vitamin A during the ovarian maturation of Litopenaeus vannamei. Linan Cabello, M A;Paniagua Michel, J;Aquaculture International; 0967-6120 ; 2004 ; vol.12 ; no.6 ; p.583-592 ;

[33] Effects of astaxanthin on lipopolysaccharide-induced inflammation in vitro and in vivo.Ohgami K;Shiratori K;Kotake S;Nishida T;Mizuki N;Yazawa K;Ohno S;Investigative Ophthalmology & Visual Science ; 0146-0404 ; 2003 ; vol.44 ; no.6 ; p.2694-2701 ;

[34]In vitro antimutagenic and in vivo anticlastogenic effects of carotenoids and solvent extracts from fruits and vegetables rich in carotenoids. Rauscher,R;Edenharder,R;Platt,KL;Mutation Research ; 0027-5107 ; 1998 ; vol.413 ; no.2 ; p.129-142.

上一篇: 红A阿斯达的来历
下一篇: 雨生红球藻的技术先进性与应用前景